中文名 | PU-WS13 |
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英文名 | pu-ws13 |
中文别名 | 8-(3,5-二氯苯基硫代)-9-(3-(异丙基氨基)丙基)-9H-嘌呤-6-胺 |
英文别名 |
8-(3,5-dichlorophenylthio)-9-(3-(isopropylamino)propyl)-9H-purin-6-amine
9H-Purine-9-propanamine, 6-amino-8-[(3,5-dichlorophenyl)thio]-N-(1-methylethyl)- 8-((3,5-Dichlorophenyl)thio)-9-(3-(isopropylamino)propyl)-9H-purin-6-amine 8-[(3,5-Dichlorophenyl)sulfanyl]-9-[3-(isopropylamino)propyl]-9H-purin-6-amine |
描述 | PU-WS13 是一种选择性的 Grp94 抑制剂,EC50 值为 0.22 μM。 |
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相关类别 | |
靶点 |
GRP94:0.22 μM (EC50) HSP90α:27.3 μM (EC50) HSP90β:41.8 μM (EC50) TRAP-1:7.3 μM (EC50) |
体外研究 | PU-WS13是Grp94抑制剂,EC50为0.22μM。 PU-WS13还略微抑制Hsp90α,Hsp90β和Trap-1,EC50分别为27.3,41.8和7.3μM。 PU-WS13(2.5-20μM)对两种非恶性细胞系没有毒性。 PU-WS13(15μM)破坏了通过Grp94介导的SKBr3细胞质膜上HER2的环状结构。 PU-WS13抑制Grp94,并且该抑制诱导HER2过表达乳腺癌细胞的凋亡并降低其活力[1]。 |
激酶实验 | Hsp90 FP竞争测定在黑色96孔微板中进行,每孔的总体积为100μL。在DMSO中制备10μMcy3B-GM和PU-FITC3的原液,并用Felts缓冲液(20mM Hepes(K),pH7.3,50mM KCl,2mM DTT,5mM MgCl2,20mM Na2MoO4和0.01%稀释)。 NP40含0.1 mg / mL BGG)。向每个孔中加入荧光染料标记的Hsp90配体(6nM cy3B-GM用于Hsp90α,Hsp90β和Grp94和3nM PU-FITC3用于Trap-1),蛋白质(10nMHsp90α,10nMHsp90β,10nM Grp94, 30nM Trap-1)和测试的抑制剂(包括PU-WS13,DMSO中的初始原液),终体积为100μLFelts缓冲液。化合物一式两份或一式三份加入。对于每个测定,在每个测定板上包括背景孔(仅缓冲液),示踪物对照(仅游离的,荧光染料标记的Hsp90配体)和结合的对照(在蛋白质存在下的荧光染料标记的Hsp90配体)。将测定板在振荡器上于4℃温育24小时,并测量FP值(以mP计)。与Hsp90结合的荧光染料标记的Hsp90配体的分数与mP值相关并且相对于竞争剂浓度的值作图。通过拟合数据获得50%结合的荧光染料标记的Hsp90配体被置换的抑制剂浓度。对于cy3B-GM,使用530nm的激发滤光器和580nm的发射滤光器,其具有561nm的二向色镜。对于PU-FITC3,使用485nm的激发滤光器和530nm的发射滤光器,其具有505nm的二向色镜。分析所有实验数据,并给出结合亲和力值作为相对结合亲和力值(EC50,50%荧光配体被化合物竞争的浓度)[1]。 |
细胞实验 | 用抑制剂(包括PU-WS13)处理细胞72小时或用Grp94 siRNA或对照siRNA转染细胞,并使用CellTiter-Glo发光细胞存活力测定评估它们的存活力。该方法基于存在的ATP的量化来确定培养物中存活细胞的数量,其表明存在代谢活性细胞[1]。 |
参考文献 |
密度 | 1.5±0.1 g/cm3 |
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沸点 | 617.4±65.0 °C at 760 mmHg |
分子式 | C17H20Cl2N6S |
分子量 | 411.352 |
闪点 | 327.2±34.3 °C |
精确质量 | 410.084717 |
PSA | 106.95000 |
LogP | 4.00 |
外观性状 | 白色固体 |
蒸汽压 | 0.0±1.8 mmHg at 25°C |
折射率 | 1.703 |
储存条件 | -20 ̊C |
水溶解性 | 微溶于水,溶于DMSO |